Методические указания
1. Способы стерилизации и дезинфекции лабораторной посуды
и лечебного инструментария
Теоретически разобрать принципы и физико-химические основы деконтаминации, учитывая особенности разрушения бактерий, грибов и их спор, вирусов, вироидов и прионов. Познакомиться с современными методами дезинфекции и контролем над ее эффективностью.
Разобрать последовательность и особенность предстерилизационной обработки в зависимости от объекта стерилизации. Познакомиться и осуществить предстерилизационную обработку и упаковку оборудования для обработки сухим жаром и паром под давлением. Изучить основные методы стерилизации, оборудование, которое используется для ее осуществления.
2. Определить по готовым посевам антибактериальное действие УФ-лучей в отношении стафилококка и кишечной палочки,
зарисовать демонстрацию
Ход исследования: 1 мл суспензии стафилококка или кишечной палочки в изотоническом растворе хлорида натрия поместить на стерильное часовое стекло и облучить лампой 15 мин на расстоянии 10 - 20 см засеять на МПБ и инкубировать 16-24 ч параллельно с контролем из необлученной культуры. Помутнение, свидетельствующее о росте должно наблюдаться только в контрольной пробирке. Просмотреть результаты исследования и зарегистрировать в таблице.
Таблица1. Бактерицидное действие УФ-лучей на взвесь бактерий
№ | Культура бактерий | Облучение УФ-лучами | |
Опыт | Контроль | ||
1. | E. coli | ||
2. | S. aureus |
Заключение ________________________________________________
3.Бактериологическое изучение антибактериального действия спирта, перманганата калия, хлорамина на культуры стафилококка и кишечной
палочки, зарегистрировать результаты
Ход исследования:диски фильтровальной бумаги смачивают раствором исследуемого дезинфицирующего вещества и помещают на поверхность МПА в чашки Петри, засеянные «газоном» культурами стафилококка и кишечной палочки. Чашки инкубируют при 37 °С в течение 24 ч. Зарегистрировать результаты проведенного опыта в таблице.
Таблица 2. Результаты исследования бактерицидных свойств ряда химических дезинфектантов
№ | Культура бактерий | Диаметр задержки роста бактерий, мм | ||
этанол | перманганат калия | хлорамин | ||
1. | E. coli | |||
2. | S. aureus |
4. Определение антимикробного действия антисептических
и дезинфецирующих веществ
Используют два вида тест-объектов: 1) шелковые нити, смоченные Е. coli; 2) шелковые нити, обработанные В. subtilis или другой спорообразующей культурой. Нити помещают в растворы фенола (5 %), лизола (5 %), хлорной извести (10 %) на 5 и 60 мин, после, чего отмывают от исследуемых веществ, помещают в МПБ и инкубируют при 37 °С 24 ч. Контрольные тесты не подвергают действию химических веществ.
Зарегистрируйте результаты исследования антибактериального действия антисептических и дезинфицирующих веществ в табл. 3 (интенсивность роста на МПБ можно описать, используя следующие определения - рост отсутствует, скудный рост, рост культуры средней интенсивности, обильный рост) и сделайте заключение.
Таблица 3. Результаты исследования бактерицидного действия антисептических и дезинфицирующих средств
Контроль | Фенол | Лизол | Хлорная известь | |||||||
E. coli | В. subtilis | E. coli | В. subtilis | E. coli | В. subtilis | E. coli | В. subtilis | |||
Экспозиция, 5 мин | ||||||||||
Интенсивность роста | ||||||||||
Обработка, 60 мин | ||||||||||
Интенсивность рота | ||||||||||
Заключение ________________________________________________
5. Изучение антибактериального действия высоких температур
Для проведения исследования используют три пробирки МПБ в каждой из которых помещена шелковая нить, пропитанная Е. coli и 3 пробирки с шелковой нитью, обработанные В. Subtilis (в данном методе в качестве тест-культур можно выбрать любые другие культуры не спорообразующих и спорообразующих бактерий). Первые две пробирки подвергают автоклавированию, вторые кипячению, третьи (контроль) никакому воздействию не подвергают. После обработки посевы помещают в термостат и выдерживают при 37 °С 24 ч. Отметьте результаты поставленного опыта в табл. 4 и сделайте заключение.
Таблица 4. Результаты исследования бактерицидного действия высоких температур
Контроль | Обработка паром под давлением | Кипячение | ||||
E. coli | В. subtilis | E. coli | В. subtilis | E. coli | В. subtilis | |
Интенсивность роста |
Заключение_______________________________________________________
6. Проведение микробиологического контроля эффективности
дезинфекции методом смывов
О качестве дезинфекции после ее проведения судят по отсутствию на изделиях медицинского назначения золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролю подлежит 1 % от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.
Контроль качества дезинфекции осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят с поверхностей изделий медицинского назначения до проведения дезинфекции и после нее. Взятие смывов производят стерильными марлевыми салфетками размером 5×5 см, простерилизованными в бумажных пакетах или чашках Петри.
Перед взятием смывов с объектов, в стерильные широкогорлые пробирки со стеклянными бусами стерильной пипеткой разливают по 10 мл стерильной водопроводной воды или нейтрализатора, соответствующего применяемому дезинфицирующему средству:
· для группы окислителей (хлор, йод, перекись содержащие средства) - 0,5-1 % раствор тиосульфата натрия;
· для катионных ПАВ - 0,5 % раствор сульфонола;
· для альдегид- и фенолсодержащих средств - вода;
· для композиционных средств - универсальный нейтрализатор, содержащий твин-80 - 3%, сапонин - 3%, гистидин - 0,1%, цистеин - 0,1%.
Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют стерильной водопроводной водой из пробирки и протирают поверхность обрабатываемого изделия. После этого салфетку помещают в пробирку с водой и затем встряхивают в течение 5 мин, избегая увлажнения пробки.
У изделий, имеющих функциональные каналы, рабочий конец изделия опускают в пробирку со стерильной водопроводной водой или нейтрализатором и с помощью стерильного шприца или пипетки 1-2 раза промывают канал этим раствором.
Смывы по 0,1 мл наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агара и на среду Эндо. Посевы выдерживают в термостате при температуре 37 °С. Результаты учитывают через 48 часов.
При наличии роста микроорганизмов на агаре идентификацию выделенных микроорганизмов проводят в соответствии с действующими методическими документами. Дезинфекцию считают эффективной при отсутствии роста микроорганизмов, указанных выше.
Провести посев смывов с медицинского инструментария и мебели, обработанного перекисью водорода, хлорамином, спиртом.
7. Определить бактериологическим путем качество
проведения стерилизации
7.1. Проведение посева с целью проверки качества стерилизации шовного, перевязочного, стоматологического и хирургического инструмента
путем прямого посева и методом смывов
Контроль стерильности проводят путем прямого посева (погружения) изделий в питательные среды (мелкие изделия или детали разъемных изделий -целиком, от шовного или перевязочного материала - отрезанные фрагменты). Стерильность крупных объектов изучают путем методов смывов. Материалом засевают две среды - тиогликолевую (для роста бактерий) и среду Сабуро (для роста грибов). Посевы на тиогликолевую среду выдерживают при 32 °С, на среду Сабуро - при 22 °С в течение 7 суток (для изделий после тепловой стерилизации). При отсутствии роста во всех пробирках делают заключение о стерильности изделия. Произвести, соблюдая правила асептики посев перевязочного материала на тиогликолевую среду и среду Сабуро.
7.2. Знакомство с результатами биологического теста контроля
качества стерилизации, зарегистрировать результаты
Бактериологический метод контроля является объективным методом оценки эффективности работы паровых, воздушных стерилизаторов и основан на выявлении гибели спор тест-культур. Осуществляется с помощью биотестов, которые представляют собой дозированное количество спор тест-культуры, помещенное в упаковку (инсулиновые флаконы, чашечки из алюминиевой фольги, диски из фильтровальной бумаги). Для контроля паровых стерилизаторов используются высушенные споры тест-культуры Bacillus stearothermophilus ВКМ В-718; для контроля воздушных стерилизаторов - Bacillus licheniformis штамм G.
Биотесты готовят бактериологические лаборатории центров дезинфекции и стерилизации или центров гигиены и эпидемиологии. После проведения стерилизации тест-культуры засевают на МПБ и инкубируют 24-48 ч. Бульон остается прозрачным, если споры погибли, т.е. если стерилизация эффективна, бульон не должен мутнеть. Ознакомьтесь с демонстрацией посевов тест-культур на МПБ, сделайте заключение об эффективности, проведенной стерилизации.
Контрольные вопросы
Что такое дезинфекция?
Что такое стерилизация?
Чем отличается стерилизацияот дезинфекции?
Какие методы физической дезинфекции Вам известны, механизм их действия, бактерицидная эффективность?
Какие методы используют для стерилизации?
Какие предметы лучше подвергать стерилизации сухим жаром?
Что такое пастеризация и тиндализация, в каких случаях они применяются?
Какие методы контроля качества стерилизации Вам известны?
Какова методика бактериологического контроля эффективности стерилизации?
Что такое стерилизация фильтрованием?
Назовите современные методы стерилизации и дезинфекции, перечислите антисептические препараты.
Как проводят дезинфекцию лабораторной посуды и изделий медицинского назначения?
Какие методы оценки качества дезинфекции изделий медицинского назначения Вам известны?
С какой целью и как осуществляют предстерилизационную очистку лабораторной посуды и изделий медицинского назначения?
Как оценить качество предстерилизационной обработки?
Дата добавления: 2021-02-19; просмотров: 363;