Отряд Гиротрихиды (Hypotrichida)


Уролептус писцис (Uroleptus piscis) – крупные инфузории, длина тела колеблется в пределах 58–85 мкм, ширина – 14–27 мкм. Тело удлиненной, овальной формы: задний край плавно закруглен, передний – немного заужен. На вентральной стороне имеется 2 ряда цирр. Клеточный рот достигает 1/3 длины тела. Макронуклеусов два, они почти вплотную прилегают друг к другу, находятся в середине клетки. Сократительных вакуолей тоже две: одна в каудальной части, другая недалеко от клеточного рта. Обитает в водоемах с сильным органическим загрязнением (прил. А, фото 13).

Окситриха пеллионелла (Oxytricha pellionella) – крупные инфузории, длина тела колеблется в пределах 50–50 мкм, ширина – 15–20 мкм. Форма тела длинноовальная, равномерно закругленная на обоих концах. В области клеточного рта имеется 8 фронтальных цирр. На заднем конце тела – 5 очень длинных цирр, выходящих за пределы клетки. Тело очень гибкое. Клеточный рот занимает 1/4 часть длины тела. Макронуклеус двучленистый, расположен по оси тела. Сократительная вакуоль расположена ближе к перистому. Хороший показатель высокой степени органического загрязнения (прил. А, фото 14).

Стилонихия митилюс (Stylonichia mytilus) – крупные инфузории, длина тела колеблется в пределах 70–90 мкм, ширина – 28–35 мкм. Форма тела удлиненно-овальная, передняя часть несколько расширена, задняя сужена. Перистом очень большой, почти треугольной формы, составляет 1/3 длины тела. Тело негибкое. Макронуклеусов два, бобовидной формы, находятся в центральной части клетки. Сократительная вакуоль находится чуть ниже перистома. Обитатель альфа-мезосапробной зоны (прил. А, фото 15).

Аспидиска костата (Aspidisca costata) – мелкие инфузории, длина тела колеблется в пределах 25–35 мкм, ширина – 20–30 мкм. Инфузории плоские, имеют широкояйцевидную форму тела. В области перистома расположены 6 коротких цирр. Перистом небольшой. Макронуклеус длинный, подковообразный. Сократительная вакуоль расположена в задней части клетки. Показатель средней и высшей степени органического загрязнения (прил. А, фото 16).

 

ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ. КУЛЬТУРАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА МИКРООРГАНИЗМОВ

Питательные среды

Микроорганизмам, как и всем другим организмам, нужен набор различных химических элементов. Некоторые элементы (С, Н, Р, O, S, Са, Мg, К) нужны в относительно больших количествах, поэтому их относят к макроэлементам, других элементов(Zn, Мn, Со, No, В, Сu, I) - достаточно наличия следов, поэтому их называют микроэлементами. Кроме этого, микроорганизмам нужны некоторые готовые органические соединения, которые называют факторами роста.

Исходя из питательных потребностей микроорганизмов для их выращивания в лабораторных условиях создают питательные (культурные) среды, содержащие набор органических и минеральных веществ, которые обеспечивают рост и развитие микроорганизмов. Питательные среды имеют исключительное значение в микробиологии. Правильный подбор состава среды обеспечивает возможность выделения микроорганизмов с мест их жилища, получение чистых культур, изучение их биохимических особенностей, способствует быстрой и правильной диагностике инфекционных болезней, дает возможность получать биомассу полезных для народного хозяйства микроорганизмов.

По происхождению и составу питательные среды можно разделить на натуральные (природные), синтетические и полусинтетические.

Натуральные среды бывают растительного и животного происхождения. Они содержат в своем составе все ингредиенты, необходимые для роста и развития микроорганизмов. Состав этих сред точно не определен. Такими средами являются отвары злаков, трав, овощные и фруктовые соки, картофель, морковь, молоко, животные ткани, кровь, сыворотка, моча, отвары мяса, морская и озерная вода и минеральные источники, яйца птиц, их зародыши и другие. Примером натуральных сред, которые наиболее часто используют, являются мясо-пептонный бульон (МПБ).

Для его приготовления готовят мясной отвар. С этой целью свежее мясо (говядину, телятину или конину) освобождают от костей, жира, сухожилий, рубят и пропускают через мясорубку 500 г такого фарша, кладут в кастрюлю, заливают 1 л водопроводной воды и оставляют в прохладном месте на 24 часа или в термостате при температуре 30ºС на 6 часов, а при 37ºС - на 2 часа для экстрагирования разнообразных необходимых для пищи микроорганизмов веществ. Затем мясо отжимают через марлю и полученный настой кипятят в течение 30 минут для сворачивания белка, который отделяют фильтрованием. После того, как настой остынет, его фильтруют через складной бумажный фильтр, предварительно смоченный водой (или сквозь фильтровальное полотно, которое накладывают на стеклянную воронку). Влажный бумажный фильтр не очень крепкий, поэтому жидкость на него наливают осторожно по стенке. Отфильтрованный настой стерилизуют. Стерильная мясная вода является основой для приготовления мясо-пептонного бульона. Для этого к 1 л мясной воды добавляют 10 г пептона и 5 г NаСl. После 10-15 минут кипячения его охлаждают, устанавливают необходимое значение рН, фильтруют и стерилизуют. Пептоны добавляют вместо свернутого мясного белка. Они являются продуктом неполного разрушения белка, их получают кислотным или ферментативным гидролизом мяса или молочного казеина. Преимуществом этих источников аминокислот является то, что они легче усваиваются и при стерилизации не сворачиваются, поэтому стерильный бульон остается прозрачным. Рост микроорганизмов в таких средах легче определяется при появлении помутнения.

Для выращивания микроорганизмов в качестве питательной среды широко используется также нехмельное пивное сусло. Этот субстрат, также, как и мясная вода, содержит большое количество полезных веществ (аминокислот, нуклеиновых кислот, витаминов, минеральных солей). Для приготовления сусла используют пророщенные ячменные семена (солод), в которых активизируются протеолитические и аминолитические ферменты.

Дрожжевая среда используется для культивирования многих гетеротрофов. Готовится она из свежих или прессованных дрожжей. Грунтовая вытяжка применяется для выделения и культивирования микроорганизмов почвы.

Синтетические среды готовят из определенных химически чистых соединений указанных концентраций. В таких средах изучают обмен веществ микроорганизмов, потому что в них можно учесть количество и качество веществ, которые поступают в клетки, изменения этих соединений под воздействием микроорганизмов, выявить метаболиты, которые выделяются бактериальными клетками в процессе жизнедеятельности. Преимущество синтетических сред заключается в их способности к воспроизводству. В зависимости от потребности микроорганизмов синтетические среды могут быть очень сложного или очень простого состава. Примером синтетической среды является среда Чапека для выращивания плесневых грибов.

Полусинтетические среды имеют сложный состав. Компонентами этих сред (углеводы, фосфаты, нитраты и другие) являются натуральные продукты: мясной отвар, дрожжевой экстракт, пивное сусло. Такие среды используют для выращивания микроорганизмов в лабораторных условиях и промышленности.

Среды для одного и того же микроорганизма могут быть различными в зависимости от задач исследования.

По назначению среды бывают:

Стандартные или среды общего назначения. В таких средах выращивают или накапливают биомассу многих микроорганизмов - это МПА, МПБ, МПЖ и другие.

Специальные среды или среды специального назначения. Эти среды предназначены для выявления тех или других биохимических особенностей микроорганизмов или для получения их культур, которые обладают особыми свойствами.

Кроме специальных сред выделяют элективные (избирательные) и дифференциально-диагностические среды.

Элективные среды (от лат. Еlektys - выбираю) подбираются таким образом, чтобы обеспечить наиболее благоприятные условия для выращивания определенных микроорганизмов. К ним могут быть добавлены вещества, которые избирательно подавляют развитие сопутствующей микрофлоры. При посеве на такие среды исследуемых материалов, которые содержат смесь различных микроорганизмов, прежде всего, будет проявляться рост того вида, для которого эта среда будет выборочной. Эти среды используют для выделения микроорганизмов из мест их естественного обитания или для получения накопительных культур. Примером может быть среда Эшби для азотфиксирующих бактерий.

Дифференциально-диагностические среды используют для определения видовой принадлежности исследовательских микроорганизмов, учитывая особенности обмена их веществ. Состав этих сред позволяет четко выявить наиболее характерные свойства микроорганизмов. К ним относятся среды с молоком, кровью, желатином, на которых изучаются протеолитические и гемолитические свойства микроорганизмов. Наличие желатиназы и других протеолитических ферментов определяют по разжижению желатина, свернутого яичного или сывороточного белка. Примером таких сред является среда Эндо, которая используется для выделения и определения бактерий кишечной палочки. Она отличается от других представителей микрофлоры кишечника тем, что образует колонии красного цвета с металлическим блеском.

Среды классифицируются по консистенции. Используются жидкостные, сухие сыпучие и плотные среды.

Жидкостные среды используют для накопления биомассы или метаболитов микроорганизмов. Это способствует обновлению культур, которые долго хранятся, поддержки и предохранению тех культур, которые плохо растут на плотных средах. На жидкостных средах легче проявляются физиолого-биохимические особенности микроорганизмов.

Сухие сыпучие среды используются в основном промышленной микробиологией. Это разваренное пшено, отруби, кварцевый песок, пропитанный питательным раствором.

Плотные среды необходимы для выделения и описания культурных свойств чистых культур микроорганизмов, потому что на них возможно получить изолированный рост отдельных клеток; для хранения культур, определения ряда их свойств (например, антагонистических отношений между микроорганизмами). Плотные питательные среды готовят из жидкостных с добавлением к ним агар-агара, геля, желатины.

Агар-агар является лучшим желеобразующим веществом (малайское желе), производится из водорослей. Это сложный полисахарид, который образует гель с температурой плавления 36-1000С и температурой застывания возле 400С. Поэтому, на средах с агаром возможно культивировать микроорганизмы при любой температуре. Кроме того, агар-агар, как питательный субстрат, используется только не многими микроорганизмами. Плотные питательные среды получают добавлением к жидкостным 1-2% агар-агара. Таким образом с МПБ готовят МПА. Для получения более плотной среды иногда добавляют 3% агар-агара.

Желатина - это вещество белковой природы, которое получают из костей и хрящей животных при их виваривании. Желатин добавляют к среде в количестве 10-12%. Как уплотнитель он используется ограниченно. Это связано с тем, что он разжижается под действием протеолитических ферментов. Кроме того, образованный желатиной гель плавится при температуре 23-250С и застывает при 200С, а большинство микроорганизмов развиваются при 30-370С. При такой температуре среда находится в расплавленном состоянии. Поэтому желатина используется главным образом для выявления протеолитической активности микроорганизмов, для получения гигантских глубинных колоний дрожжей, при их идентификации.

Промышленным способом изготавливаются некоторые среды в виде сухих порошков. Преимущество таких сред заключается в их стандартности, стабильности, простоте приготовления и удобстве при транспортировке. Сухие питательные среды представляют собой гигроскопичные порошки, которые хранятся в специальных флаконах. В лаборатории из порошков готовят среды согласно рецептуре, указанной на этикетке. Чаще всего используют сухие среды Эндо, сухой питательный агар, рыбный питательный агар и другие.

Питательные среды сразу после приготовления стерилизуют.

 



Дата добавления: 2021-02-19; просмотров: 422;


Поиск по сайту:

Воспользовавшись поиском можно найти нужную информацию на сайте.

Поделитесь с друзьями:

Считаете данную информацию полезной, тогда расскажите друзьям в соц. сетях.
Poznayka.org - Познайка.Орг - 2016-2024 год. Материал предоставляется для ознакомительных и учебных целей.
Генерация страницы за: 0.01 сек.