МИКОЗОВ, ВЫЗЫВАЕМЫХ ПЛЕСНЕВЫМИ И ДРОЖЖЕПОДОБНЫМИ ГРИБАМИ. БИОПРЕПАРАТЫ

Цель занятия. Ознакомить студентов со свойствами возбудите­лей, методами микологического исследования и этапами лабора­торной диагностики трихофитии, микроспории, аспергиллеза, пенициллиоза, мукоромикоза, кандидамикоза, эпизоотического лимфангита, кокцидиоидомикоза.

Оборудование и материалы. Материал от животных, поражен­ных трихофитией и микроспорией, культуры грибов рода Мисог, Aspergillus, Candida на плотной питательной среде Сабуро или др., препаровальные иглы, микологические крючки, предметные и покровные стекла, смесь воды, спирта, глицерина (поровну), 20%-й раствор гидроксида натрия или гидроксида калия, 50%-й водный раствор глицерина, плакаты, таблицы, биопрепараты.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Микозы — группа болезней животных и человека, вызывае­мых патогенными микроскопическими грибами. Основные ме­тоды лабораторной диагностики этих болезней: микроскопия, выделение и идентификация грибов-возбудителей.

Дерматомикозы. Заболевания кожи и ее производных. Восприимчивы сельскохозяйственные животные всех видов (преимущественно молодняк), пушные и хищные звери. У людей инфицированию более подвержены дети. Важным фактором за­ражения служит мацерация кожи.

Возбудители дерматомикозов — грибы дерматофиты, принад­лежат к высшим, несовершенным (класс Deuteromycetes) грибам, широко распространены в природе. Они паразитируют на ороговевших субстратах, выделяя кератиназу, разлагающую кератин эпидермиса, волос, ногтей. К дерматофитам относят представи­телей трех родов: Trichophyton, Microsporum, Epidermophyton (более 40 видов). В быту трихофитию и микроспорию называют «стригу­щий лишай».

Трихофития. Инфекционное заболевание. Характеризуется появлением на коже округлых или овальных облысевших очагов с мягкими, иногда сухими корочками в области головы. Поражения могут распространяться по поверхности тела животного (рис. 117, 118).

При поверхностной форме размер повреждений 1...5см в диа­метре, иногда развиваются более обширные очаги. Корки легко отделяются вместе со склеенными волосами, под ними на слегка влажной поверхности кожи торчат обломавшиеся волосы, кое-где встречаются папулы и пузырьки.

При глубокой форме болезни наблюдают несколько очагов поражения с ярко выраженными экссудативными и воспалитель­ными процессами, инфильтрацию, большое количество фолликулярных пустул. Встречаются множественные экссудативные поражения. Все очаги покрыты засохшим серозно-гнойным экс­судатом. При удалении корок обнаруживают эрозии. Часто отме­чают осложнения секундарной инфекцией.

Основные возбудители трихофитии: у крупного рогатого ско­та, буйволов, зебу, оленей — Т. verrucosum (син. Т. faviforme), реже Т. mentagrophytes; у лошадей — Т. equinum и Т. mentagrophytes; у овец и коз — Т. verrucosum, Т. mentagrophytes; у свиней — Т. mentagrophytes; у верблюдов — Т. verrucosum, Т. sarkisovi; у собак и кошек — Т. mentagrophytes (кошки редко болеют трихофитией); у пушных зверей и кроликов — Т. mentagrophytes, редко Т. verrucosum; у лабораторных животных (мыши, крысы, хомяки, морские свинки) — Т. mentagrophytes; у птиц — Т. gallinae. Этот возбудитель известен давно как возбудитель парши (фавуса) пре­имущественно у рода куриных. Раньше болезнь называли «белый гребень».

Микроспория. Инфекционное заболевание кожи и ее произ­водных. Появление очагов поражения сопровождается воспали­тельным процессом, обламыванием и выпадением волос, иногда наблюдают поражение когтей.

Основные возбудители микроспории: у кошек и собак — М. canis (син. М. lanosum); у лошадей — М. equinum, редко М. distorum и М. gypseum; у свиней — М. canis; у пушных зверей, кроликов — М. canis; у лабораторных животных — М. canis; у крупного рогатого скота и овец — М. canis и М. gypseum. Микро­спорией болеют дикие звери, а также животные зоопарков и цир­ков.

Лабораторная диагностика трихофитии и микроспории основа­на на результатах микологического исследования.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале методом световой микроскопии и люминесцентного анализа, выделение чистой культуры посевом на специальные питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим свойствам.

Материал для исследования. В лабораторию направляют соскобы с пораженных частей тела животного вместе с корочками и чешуйками, пораженные волосы с участков, граничащих со здоровой кожей.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Чаще готовят неокрашенные (нативные) препараты. Исследуемый материал помещают в чашки Петри, измельчают ножницами и расщепля­ют с помощью скальпеля. Затем кусочки волос, чешуек, корочек переносят на предметное стекло, наносят каплю 20%-го раствора гидроксида натрия или гидроксида калия и слегка подогревают над пламенем горелки до отхождения паров. После этого добав­ляют каплю 50%-го водного раствора глицерина. На приготов­ленный препарат накладывают покровное стекло и просматрива­ют сначала под малым увеличением сухого объектива (х 8), затем с объективом х 40 или с помощью иммерсионной системы.

С целью дифференциации грибов рода Trichophyton и Microsporum учитывают характер расположения спор в поражен­ном волосе (рис. 119, 120) (цепочками или мозаичное), пользуясь следующими критериями:

Люминесцентный анализ заключается в следующем. Исследу­емый материал помещают в чашки Петри на расстоянии 20 см от ртутно-кварцевой лампы ПРК-2 или ПРК-4 с фильтром Вуда и просматривают под ультрафиолетовыми лучами в затемненном помещении. Пораженные возбудителем микроспории волосы дают яркое зеленоватое свечение. Корочки, чешуйки не светятся. Кроме того, с помощью люминесцентного анализа проводят ран­нюю диагностику атипичных и скрытых форм микроспории.

Обнаружение мицелия гриба и различных спор в материале — до­статочное основание для постановки диагноза на дерматомикозы.

Выделение и идентификация культур возбудителей трихофитии и микроспории. Культуры выделяют в сомнительных случаях для подтверждения диагноза. Для получения чистой культуры грибов отдельные волосы или фрагменты кожи, корочки высевают на специальные питательные среды — агар Сабуро, сусло-агар, МПА, содержащий 2 % глюкозы, агар Чапека и некоторые дру­гие. Чтобы освободить исследуемый материал от сопутствующей микрофлоры, перед посевом на питательные среды его обраба­тывают 60%-м этанолом в течение 5...7 мин, а затем дважды от­мывают дистиллированной водой и подсушивают в термостате при 37 °С, или же в питательные среды добавляют антибиотики (пенициллин, стрептомицин и др.) из расчета 100...200 ЕД/мл. Посевы инкубируют при температуре 26...28 °С 20...30сут и бо­лее. У выросших культур грибов изучают культуральные и мор­фологические свойства. Готовят препараты «раздавленная капля» (см. тему 5) и микроскопируют. При идентификации видов гри­бов руководствуются признаками, изложенными в таблице 35.

Биопрепараты. Препарат ТФ-130 (ВИЭВ) и сухая вакцина ЛТФ-130 (ВИЭВ) против трихофитии крупного рогатого скота содержат аттенуированный штамм Trichophyton verrucosum (faviforme).

Вакцина СП-I против трихофитии лошадей из штамма Trichophyton equinum.

Вакцина Триховис (ВИЭВ) сухая против трихофитии овец из штамма Trichophyton verrucosum (вариант автотрофикум).

Вакцину МЕНТАВАК против трихофитии пушных зверей и кроликов готовят из культуры Trichophyton mentagrophytes.

Вакцина Камелвак-ТС против трихофитии верблюдов содер­жит аттенуированный штамм гриба Trichophyton sarkisovi.

Вакцина МИКОЛАМ против трихофитии и микроспории плотоядных животных, нутрий и кроликов.

Поливак-ТМ — инактивированная вакцина против дермато-фитозов собак, включая 8 видов и разновидностей грибов рода Trichophyton и Microsporum.

Вакцина ВАКДЕРМ против дерматофитозов животных пред­назначена для борьбы с микроспорией и трихофитией собак, ко­шек, пушных зверей и кроликов. Готовят из высокоиммуногенных штаммов Microsporum canis, Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes.

Аспергиллез.Заболевание домашних и диких птиц, пчел, редко млекопитающих (крупный рогатый скот, овцы, козы, свиньи, ло­шади); восприимчив человек. Характеризуется гранулематозным поражением органов дыхания, в основном легких, нередко абор­тами. В легких при размножении возбудителя формируется аспергиллома. Аспергиллома (аспергиллезная мицетома) — шаро­образная масса мицелия диаметром до 2 см (обычно Aspergillus fumigatus) и клеточного детрита, заполняющая полости легкого, образовавшиеся вследствие разрушения ткани. В отечественной практике этим термином обозначают любую инфекционную гра­нулему, вызванную видами Aspergillus.

Возбудители аспергиллеза принадлежат к высшим несовер­шенным грибам класса Deuteromycetes, рода Aspergillus, группе го­ловчатых плесеней. Основные возбудители аспергиллеза живот­ных — A. fumigatus, A.flavus, A. niger.

Лабораторная диагностика аспергиллеза основана на результа­тах микологического исследования.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культу-рально-морфологическим и патогенным свойствам.

Материал для исследования. В лабораторию направляют свежие трупы мелких животных, наложения, узелки, пораженные орга­ны или их кусочки, мокроту, яйца.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Непосред­ственное обнаружение гриба в неокрашенном или окрашенном препарате имеет значение лишь для предварительного диагноза. При этом выявление характерных для аспергиллов органов пло­доношения особенно ценно и значительно ускоряет лаборатор­ную диагностику. Исследуемый материал помещают в смесь этанола с глицерином и водой поровну или в физиологичес­кий раствор. Препараты микроскопируют, как описано в теме 5, ориентируясь на обнаружение органов плодоношения (рис. 121) — головка, стеригмы со спорами (см. тему 5).

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Для посева используют агар Чапека, Сабуро, кровяной, мозговой, кукуруз­ный агары, МПА (рН 5,5...6,5). Гранулематозную ткань обжигают над пламенем, вырезают стерильно кусочки из середины и рас­кладывают их на плотную среду в чашки Петри, а экссудат засе­вают в пробирки со средой, инкубируют при 25 и 37 °С. На 3...5-е сутки на плотных средах образуются характерные для аспергилл колонии (рис. 122... 124).

A.fumigatus на агаре Чапека образует разрастающиеся коло­нии — ровные или шероховатые. Развитый воздушный мицелий придает им войлочный вид белого цвета или, позднее, зеленого. Зрелые культуры в стадии спороношения черного цвета. С обрат­ной стороны колонии бесцветны или желтовато-коричневого цвета. Межвидовая дифференциальная диагностика основана на различиях в строении стеригм и конидий.

В препаратах из культуры можно обнаружить гладкие, корот­кие, зеленого цвета конидиеносцы. Воздушные гифы бывают септированы и без перегородок. Колбообразные вздутия, содер­жащие споры, находятся только в верхней части гифов. У стеригм одноярусное строение. Конидии темно-зеленого цвета, ок­руглые, шиповатые или полушаровидной формы.

A.flavus, A. niger на агаре Чапека формируют широко разраста­ющиеся колонии с обильным спороношением. Цвет колонии за­висит от массы конидий, развивающихся на конидиеносцах. При микроскопии культур обнаруживают бесцветный или светлоок­рашенный септированный мицелий. Часто образуются склероции шаровидной формы, представленные толстостенными клет­ками.

Биопроба. Метод применяют для подтверждения патогенности выделенных культур аспергилл. Кроликам, морским свинкам или белым мышам вводят внутривенно суспензию спор грибов (0,5... 1) • 10⁶, что вызывает развитие генерализованного процесса с типичным поражением органов дыхания, почек, сердца. При вскрытии в этих органах обнаруживают множество мелких узел­ков с интенсивным развитием гриба.

Птице скармливают корм, зараженный спорами аспергилла, или проводят ингаляцию спор в дыхательный аппарат.

С помощью микологических исследований дифференцируют аспергиллез от микозов, Вызванных другими плесневыми гриба­ми.

Пенициллиомикоз. Заболевание многих видов животных, воз­никающее на фоне снижения общей резистентности организма и характеризующееся поражением кожи, слизистых оболочек.

Основные возбудители пенициллиомикоза — грибы рода Penicillium: P. crustosum, P. glaucum, P. mycetomagenum.

Лабораторная диагностика пенициллиомикоза основана на ре­зультатах микологического исследования. Диагностика данного микоза затруднена в связи с тем, что грибы рода Penicillium часто выделяют из легких и других тканей при туберкулезе и других инфекциях. Важным признаком для подтверждения диагноза служит обнаружение в очаге поражения элементов гриба, фаго­цитированных макрофагами.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим и патогенным свойствам.

Материал для исследования. В лабораторию направляют пора­женные участки кожи, слизистых оболочек, пораженные органы и ткани от трупов.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Препараты «раздавленная капля» исследуют под микроскопом в окрашен­ном (по методам Грама, Циля—Нильсена и др.) и неокрашенном виде.

Важным диагностическим признаком служит обнаружение в нативных препаратах септированного мицелия и конидиеносцев, ветвящихся на вершине один или несколько раз в виде кисточки.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Материал высевают на сусло-агар, агары Чапека, Сабуро и др. и культиви­руют так же, как и возбудителей аспергиллеза и мукоромикоза. У выделенных культур грибов изучают морфологию колоний и внутреннюю структуру (табл. 36).

Биопроба. Заражают кроликов, морских свинок, крыс, белых мышей подкожно. На месте введения культуры грибов-возбуди­телей развивается абсцесс и формируется грануляционная ткань. При внутрибрюшинном и внутривенном введении развивается генерализованный процесс.

Мукоромикозы (мукорозы). Хронические заболевания, вызыва­емые плесневыми грибами. Характеризуются развитием гранулематозного процесса, сходного с туберкулезом, в лимфатических узлах и в легких, реже в других органах и тканях (кожа, ногти, слизистые покровы, пищеварительный тракт, центральная не­рвная система, мозг). К возбудителю мукороза восприимчивы свиньи, лошади, крупный рогатый скот, овцы, пушные звери; из лабораторных животных — морские свинки, мыши; болеют обе­зьяны, тюлени. Мукорозы людей встречаются в виде спорадичес­ких случаев.

Основные возбудители мукоромикоза — грибы видов Мисог mucedo, М. racemosus, Rhisopus nigricans и др.

Лабораторная диагностика мукоромикоза основана на резуль­татах микологического исследования.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и идентификацию возбуди­теля по культурально-морфологическим и патоген­ным свойствам.

Материал для исследо­вания. Объектом исследо­вания служат некротизированные ткани, гной, экс­судат, гранулематозные ткани и др.

Микроскопия препара­тов из исходного материа­ла. В препаратах из иссле­дуемого материала в поло­жительных случаях обна­руживают несептированный мицелий. В круглых спорангиях на спорангиеносце видны эндоспоры (рис. 125). Для старого мицелия характерно присутствие хламидоспор.

Рис. 125. Четырехдневная культура Мисог racemosus на агаре Чапека:

1 — мицелий;

2— спорангия;

3— спорангиоспоры внутри спорангии и вне ее;

4— спорангиеносец

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Гранулематозную ткань обжигают над пламенем горелки и стерильно выре­зают из середины кусочки, которые раскладывают на поверхнос­ти среды Чапека (в чашках Петри) или других сред. Посевы ин­кубируют при 25...30ºС. Культуры грибов довольно крупные, ак­тивно развиваются на искусственных питательных средах. На третьи сутки приобретают вид войлочных клочковатых серовато-белых колоний (рис. 126), в последующем цвет может изменяться до коричневого или бурого.

Рис. 126. Войлочно-клочковатая серо­вато-белая колония двухдневной куль­туры М. racemosus на агаре Чапека

Биопроба. Метод применяют для изучения патогенности выде­ленных из исходного материала культур гриба. Кроликам, морс­ким свинкам и белым мышам вводят внутривенно, внутримышечно или внутрибрюшинно смыв спор и мицелия чистых куль­тур. Гриб развивается во всех внутренних органах и тканях. Кро­лики погибают через 15...20 дней после внутривенного заражения, мыши — через 5... 15 дней. Чаще поражаются почки, реже печень, сердце, селезенка (абсцессы, некроз эпителия ка­нальцев, разрастание грануляционной ткани).

Кандидамикоз (кандидоз, молочница и др.). Заболева­ние животных и человека. Характеризуется поверхно­стным поражением кожи, слизистых оболочек рото­вой полости, наружных мо­чеполовых органов. Возбу­дитель также вызывает вис­церальный микоз с поражением дыхательных пу­тей, желудочно-кишечного тракта, мочеполовой систе­мы, молочной железы, мы­шечной, костной и сердеч­но-сосудистой систем, ор­ганов зрения. При генера­лизации кандидамикозного процесса могут поражаться многие органы одновре­менно (рис. 127). Следстви­ем кандидамикоза у коров могут быть маститы, эндометриты и аборты.

Рис. 127. Серовато-белые мелкие узелки на слизистой зоба цесаренка, павшего от кандидамикоза

Основные возбудители кандидамикоза — С. albicans и С. tropicalis, реже С. krusei, род Candida, класс Deuteromycetes. Они широко распространены в природе. Наиболее часто их выделяют с поверхности различных фруктов, ягод, овощей. Candida albicans и др. входят в состав нормальной микрофлоры организма челове­ка и животных. Любые наруше­ния функций иммунокомпетентных клеток или нормаль­ного микробного ценоза при­водят к возникновению заболе­вания. С. albicans в основном поражает птиц, кур, гусей, уток, цесарок, индеек, голубей, фазанов и др. Более тяжело боле­ют поросята, телята, ягнята, щенки.

Лабораторная диагностика кандидамикоза основана на резуль­татах микологического исследования.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале методом световой микроскопии, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культу-рально-морфологическим и ферментативным свойствам.

Материал для исследования. Объектом исследования служат пленки, наложения, соскобы со слизистой оболочки, содержи­мое язв и эрозий, кусочки внутренних органов.

Микроскопия препаратов из исходного материала. В тканях жи­вотных С. albicans может образовывать дрожжевые клетки и гифы, обнаружение которых имеет диагностическое значение (рис. 128). Клеточная стенка мицелия в этом случае состоит из трех слоев и значительно уступает по толщине пяти-семислойной структуре дрожжевых клеток.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Материал (кроме внутренних органов) берут стерильной бактериологичес­кой петлей и тщательно растирают петлей или стеклянным шпа­телем по поверхности среды. Кусочки печени, селезенки или по­чек погружают в спирт, обжигают над пламенем спиртовки, а затем из глубины органов вырезают кусочек ткани и проводят им по поверхности плотной среды. Кровь из сердца, содержимое желудка и кишечника, почечной лоханки высевают на агар Сабуро в чашки Петри. Посевы инкубируют при 37° С 24...48 ч до появ­ления на питательной среде колоний (рис. 129, 130).

Идентификацию культур грибов проводят в два этапа.

На первом этапе изучают культурально-морфологические признаки выделенной культуры в первичном посеве на плотной питательной среде (агар Сабуро, МПА с глюкозой) (табл. 37).

На втором этапе для окончательной идентификации грибов рода Candida выделенную культуру высевают на жидкие пита­тельные среды (бульон Сабуро, картофельный, кукурузный агары или на аналогичные жидкие среды — кукурузный или картофель­ный отвар) и определяют культуральные признаки и цитоморфологические особенности. Посев на картофельный и кукурузный агары делают штрихом в толщу среды, разрезая петлей поверх­ность агара. При микроскопии учитывают наличие псевдомицелия, тип роста на этих средах; при­сутствие хламидоспор на кукуруз­ном агаре в чашках Петри исследу­ют при малом увеличении (рис. 131).

Рис. 131. Пятидневная культура С. albicans на кукурузном агаре:

1 — шаровидные хламидоспоры; 2— контурная оболочка хламидоспоры

На жидких питательных средах грибы С. albicans через 24...48 ч вы­зывают помутнение среды и обра­зование рыхлого осадка на дне пробирки. Для грибов С. tropicalis и С. krusei характерны глубинный рост и образование пленки и при­стеночного кольца.

Для дифференциации видов грибов рода Candida определяют ферментативную активность на жидких средах Гисса, содержащих 3 % различных углеводов и инди­катор Андреде. Посевы наблюдают в течение 10... 15 дней, учитывают кислото- и газообразование. Фер­ментативные свойства приведены в таблице 38.

Эпизоотический лимфангит (бластомикоз, африканский сап). Хроническое заболевание животных. Характеризуется пораже­нием лимфатических узлов, лимфатических сосудов и подкож­ной клетчатки с образованием язв, абсцессов и узелков. В отли­чие от дерматомикозов поражены более глубокие слои кожи. Бо­леют однокопытные животные: лошади, мулы, ослы, зарегистри­рованы случаи заболевания этим микозом парнокопытных — верблюдов и КРС (рис. 132).

Возбудитель эпизоотического лимфангита — Histoplasma farciminosus (син. Criptococcus farciminosus). Классификация криптококка неясна: одни исследователи причисляют его к бластомицетам, другие на основании некоторых биологических данных — к несовершенным грибам.

Лабораторная диагностика эпизоотического лимфангита осно­вана на результатах микологического и серологического исследо­ваний.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя при микроскопии препаратов-от­печатков из исходного материала, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим и серологическим свойствам.

Материал для исследования. В лабораторию направляют содер­жимое абсцессов, гнойный экссудат язв.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Готовят пре­парат «раздавленная капля». Чаще микроскопируют неокрашен­ный препарат или красят по Граму или Романовскому—Гимзе. Благодаря окраске гранулы в цитоплазме хорошо различимы. Возбудителя эпизоотического лимфангита относят к дрожжеподобным грибам. В исследуемом материале обнаруживают криптококки — клетки яйцевидной или ли монообразной формы с четко выраженной двухконтурной оболочкой, клетки заострены на одном или обоих концах. Размеры криптококков З...5мкм в длину и 2...3,5 мкм в ширину. В гное находят по 2...3 криптококка, соединенных своими полюсами и иногда образующих цепоч­ки (рис. 133). Часть криптококков можно найти в лейкоцитах (нейтрофилах и макрофагах). Центральная часть криптококков представляет собой гомогенное, полужидкое вещество, содержа­щее одно или несколько (2...4) блестящих зернышек, которые находятся в беспрерывном и оживленном движении.

Необходимо учитывать, что для Н. farciminosus характерен ди­морфизм, т. е. морфология гриба в патологическом материале и в культуре различна.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. В сомни­тельных случаях микроскопии материал высевают на питатель­ные среды. Первичное выделение гриба затруднительно, но вы­деленную культуру удается поддерживать сравнительно легко. Гриб выращивают на МППА, глюкозно-глицериновом МПА (со­держание углеводов 2...2,5 %), агаре Сабуро при температуре 25...30°С.

Через 10... 12 дней на плотных питательных средах образуются колонии, сначала мелкие, в последующем более крупные, возвы­шающиеся над поверхностью среды. Колонии складчатые, сухие, кремового, а позднее коричневого цвета. В мазках из культуры дрожжевые клетки не обнаруживают. Вне живого организма гриб развивается в мицелиальной форме. Мицелий септированный, ветвящийся, многоклеточный.

Серологическая диагностика основана на ре­зультатах РСК с сапным антигеном.

Аллергическая диагностика. Для аллергической диагностики лимфангита используют гистоплазмин (Королевой) — фильтрат 3...4-месячной культуры криптококка. При сомнительном ре­зультате лабораторного исследования применяют дифференци­альную диагностику лимфангита и сапа, используя глазную про­бу с маллеином и подкожную пробу с гистоплазмином.

Кокцидиоидомикоз (ревматизм пустыни, долинная лихорадка и др.). Хроническое заболевание животных и человека, характери­зуется гранулематозным поражением лимфатических узлов, иногда легких у крупного рогатого скота и диссеминированной формой процесса со злокачественным течением у собак.

К заболеванию восприимчивы крупный рогатый скот, лоша­ди, ослы, овцы, свиньи, грызуны (мыши, крысы и др.). Описаны заболевания койотов, лам, кенгуру, обезьян, тигров и других животных. Птицы не болеют. Кокцидиоидомикоз человека относят к группе особо опасных микозов.

Возбудитель кокцидиоидомикоза — дрожжевидный почвен­ный гриб Coccidioides immitis.

Лабораторная диагностика кокцидиоидомикоза основана на ре­зультатах микологического и серологического исследований.

Микологическое исследование включает в себя обнаружение возбудителя в исходном материале методами световой микроскопии и биопробы, выделение чистой культуры посевом на питательные среды и идентификацию возбудителя по культурально-морфологическим и патогенным свойствам.

Материал для исследования. Объектом исследования служат гной, кровь, содержимое очагов поражения и кусочки поражен­ных органов.

Микроскопия препаратов из исходного материала. Из материала готовят препараты «раздавленная капля». При работе с такими препаратами нужно соблюдать предельную осторожность, так как грибы остаются живыми. Можно микроскопировать препа­раты в 10%-м растворе щелочи при подогревании: в этом случае гриб погибает быстро, но происходит деформация сферул. Чтобы избежать заражения исследователя грибом С. immitis, перед мик­роскопией патологический материал рекомендуют залить 10%-м раствором формалина на 10...15 мин. Такая обработка убивает гриб, но не влияет на его морфологические признаки. Положи­тельным результатом считают обнаружение сферул (например, в гное и мокроте) мицелия (рис. 134, 135). Сферулы — образования правильной круглой формы с двухконтурной оболочкой и с мно­гочисленными эндоспорами. Протоплазма зернистая. Диаметр сферулы от 20 до 120 мкм. Эндоспоры мелкие. Иногда обнаружи­вают сферулы с разорванной оболочкой и освобождающимися эндоспорами. Прорастание сферул в мицелий можно наблюдать непосредственно в патологическом материале. Для этого на предметное стекло наносят несколько капель в смеси с физиоло­гическим раствором, покрывают покровным стеклом и для пре­дохранения от высыхания заклеивают парафином по краям. От­сутствие сферул в препаратах при микроскопическом исследова­нии не дает оснований отрицать кокцидиоидомикоз.

Выделение и идентификация культуры возбудителя. Для посева исследуемый материал предварительно обрабатывают антибио­тиками в течение 30...60 мин для подавления бактериального ро­ста. Пенициллин добавляют из расчета 20 ЕД/мл среды, стрепто­мицин — 40 ЕД/мл. Для получения мицелиальной формы гриба в качестве питательной среды используют агар Литмана, агар Са­буро, сусло-агар; для получения дрожжевидной формы — кровя­ной агар, печеночный агар с глюкозой, мартеновский бульон (табл. 39). Культивируют при 25...27 и 35...37 °С.

Биопроба. Заражают нативным материалом и солевой суспензией из чистой культуры гриба. К кокцидиоидомикозу восприимчивы мыши, морские свинки, кролики, собаки, куриные эмбрионы. При развитии патологического процесса в зависимости от метода введе­ния исследуемого материала отмечают различные поражения.

При внутривенном введении культуры гриба развиваются абс­цессы во внутренних органах, гибель животных наступает через 20...30 дней.

При интратрахеальном заражении обнаруживают поражение легких и трахеобронхиальных лимфатических узлов.

При внутрибрюшинном заражении через 7... 10 дней процесс распространяется по брюшине с поражением внутренних органов.

При подкожном и интрацеребральном методах заражения возникает местный процесс с поражением лимфатических узлов.

При интратестикулярном — развивается гнойный орхит. В гное обнаруживают сферулы различных размеров и на разных этапах созревания, реже мицелий.

Двух-трехдневные куриные эмбрионы погибают через 3...6 дней после заражения. Использованные в работе материалы и инструменты подлежат немедленной стерилизации в автоклаве.

Серологическая диагностика основана на ре­зультатах следующих реакций: РА с антигеном из убитой культу­ры, РСК с кокцидиоидином, РП с полисахаридным антигеном.

При работе с С. immitis необходимо соблюдать правила техники безопасности, в частности надевать марлевые маски. Посевы про­водить лучше в пробирки со средой Литмана, мясо-пептонный бу­льон или другие жидкие среды, так как их удобнее использовать для микроскопических работ и заражения животных. На этих сре­дах гриб образует более компактные, непылящие колонии. Пере­сев с твердых сред рекомендуют делать до начала спороношения.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Приготовить и промикроскопировать препараты из матери­ала от животных, больных дерматомикозом.

2. Изучить культуральные свойства возбудителей трихофитии и микроспории.

3. Изучить культурально-морфологические характеристики грибов родов Mucor, Aspergillus, Candida.

4. Ознакомиться с биопрепаратами.

Контрольные вопросы

1. Какие микроорганизмы вызывают дерматомикозы?

2. Какова схема лабораторного исследования на дерматомикозы?

3. По каким критериям дифференцируют грибы родов Microsporum и
Trichophyton?

4. Какие плесневые и дрожжеподобные грибы вызывают микозы?

5. Какие вакцины применяют против дерматомикозов сельскохозяйственных
животных?

Тема 38

ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА МИКОТОКСИКОЗОВ, ВЫЗЫВАЕМЫХ ГРИБАМИ РОДОВ ASPERGILLUS, PENICILLIUM, FUSARIUM, STACHYBOTRYS, DENDRODOCHIUM

Лабораторная диагностика микотоксикозов основана на ре­зультатах токсико-биологических, органолептических, микологи­ческих и физико-химических исследований.

Материал для исследования. В лабораторию направляют пробы всех кормов, входивших в суточный рацион животного в течение одного месяца до проявления болезни, а также остатки кормов из кормушек, содержимое желудочно-кишечного тракта павших животных и др. Отбор средних проб корма проводят ветеринар­ные и зооинженерные специалисты с представителями предпри­ятий. Отобранную среднюю пробу делят на две части, упаковы­вают в чистые сухие стеклянные банки объемом 2...3 л, гермети­чески закрывают и пломбируют. Одну часть отправляют в лабо­раторию, другую хранят в хозяйстве в течение одного месяца в условиях, предотвращающих порчу или вторичное загрязнение. В документе указывают цель исследования, вид кормового сред­ства, назначение, массу всей партии, место отбора пробы, основ­ные клинические признаки у больных животных. Прилагают ко­пию акта вскрытия трупов (при гибели животных), копию экс­пертиз ветеринарной лаборатории об исключении инфекционных болезней и отравлений животных химическими или растительными ядами (если такие исследования были проделаны лабораторией).

Органолептическое исследование. Определяют внешний вид, цвет, запах корма, выявляют признаки, отличающие дефектный корм от доброкачественного (изменение цвета; затхлый, плесне­велый или гнилостный запах; наличие на поверхности корма ми­целия гриба и др.). О санитарном качестве зерна можно косвенно судить по цвету и состоянию зерновых оболочек.

Токсикологическое исследование. Проводят на различных био­логических моделях: кроликах, аквариумных рыбках гуппи поро­ды Винер, белых мышах или сельскохозяйственных животных.

На кроликах ставят кожную пробу. К 50 г измельченного кор­ма добавляют 150 мл диэтилового эфира (эфир для наркоза) или ацетона. Смесь встряхивают при комнатной температуре с помо­щью шуттель-аппарата 3 ч. Экстракт фильтруют и выпаривают до полного исчезновения запаха. Налет, оставшийся на стенках чашки, смывают небольшим количеством эфира и используют для биопробы, которую ставят на кроликах массой 2...2,5 кг. Предварительно у кролика в области бедра, лопатки или бока выстригают участок кожи 6 см². Пигментированная или с при­знаками шелушения кожа непригодна для исследования.

На одном кролике можно ставить не более четырех проб. На выстриженный участок кожи кролика наносят стеклянной ло­паткой половину экстракта и легко втирают его. При восковидной консистенции экстракта его предварительно подогревают. Часть участка ос