ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ И КУЛЬТИВИРОВАНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ
Цель занятия. Ознакомить студентов с типами питательных сред, методами их конструирования и культивированием микроорганизмов.
Оборудование и материалы. Агар-агар, пептон, желатина, мясная вода, перевар Хоттингера, МПА, МП Б, среды Китта—Тароцци, Эндо, Левина, Вильсон—Блера, Гисса, сухие питательные среды, кровяной МПА, потенциометр, индикаторные бумажки, стерильная дефибринированная кровь барана, термостат, анаэростат.
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
К любой питательной среде предъявляют ряд основных требований: 1) стерильность и по возможности прозрачность; 2) содержание необходимых для жизнедеятельности клеток биохимических факторов — источников энергии, углерода, азота, серы, а также неорганических ионов — обязательно в форме, доступной для усвоения микроорганизмами; 3) оптимальные значения ряда биофизических показателей: концентрации водородных ионов (рН), окислительно-восстановительного потенциала (Eh), активности воды (aW), осмотического давления.
Концентрация водородных ионов (рН). Микроорганизмы способны существовать в строго определенных границах кислотности питательной среды. В зависимости от кислотного оптимума бактерии подразделяют на нейтрофилы, алкалофилы и ацидофилы.
Вода слабо диссоциирует, поэтому концентрация ионов водорода Н+ (реально существуют ионы Н9O4+ — гидратированная форма иона гидроксония Н3О+) и гидроксид-ионов ОН- в чистой воде при 25 °С составляет 10-7 моль/г. Преобладание в растворе водородных ионов определяет его кислую реакцию, гидроксильных — щелочную, при равной концентрации ионов Н+ и ОН- раствор нейтрален. Произведение концентраций водородных и гидроксильных ионов в конкретном растворе всегда равно постоянной величине (константе), которую называют ионным произведением воды: К = (Н-7)(ОН-7) = 10-14. Следовательно, чтобы судить о реакции среды, достаточно определить концентрацию только одного из указанных ионов. Обычно определяют концентрацию ионов водорода. Вместо концентрации ионов водорода указывают ее десятичный логарифм, взятый с обратным знаком, называют эту величину водородным показателем и обозначают символом рН = -lg (Н+). Измеряют рН питательных сред потенциометрическим (электрометрическим) или колориметрическим способами.
Последовательность операций при определении рН на иономере И-130 приведена далее. (Показания стеклянного электрода предварительно калибруют по буферам с точно известными значениями рН.)
1. Прибор включают в сеть и прогревают в течение 30 мин.
2. Так как температура раствора влияет на результат определения рН, на штативе устанавливают термометр или автоматический термокомпенсатор. Переключатель рода термокомпенсации на передней панели переводят в соответствующее положение.
Стаканчик предварительно ополаскивают анализируемым раствором, электроды промывают дистиллированной водой и также ополаскивают анализируемым раствором, подсушивают фильтровальной бумагой.
Анализируемый раствор наливают в стаканчик, в который погружают электроды. Время снятия показаний не более 3 мин.
После окончания измерений электроды промывают дистиллированной водой и погружают в стаканчик с дистиллированной водой.
При колориметрическом определении используют индикаторы. Все индикаторы представляют собой слабые кислоты или основания, и их диссоциация в растворе зависит от концентрации водородных ионов. Недиссоциированная молекула индикатора и его ионы разного цвета. Внося индикатор в раствор с неизвестной концентрацией водородных ионов, сопоставляют его цвет в исследуемом растворе с цветом раствора с известным значением рН. Грубую оценку рН (±0,2) проводят с помощью бумажных индикаторов, к которым приложена цветовая шкала: каждая цветная полоса на бумажной карточке соответствует определенному значению рН. Универсальный индикатор изменяет окраску в диапазоне рН от 2 до 10.
Большинство бактерий растут в питательных средах со слабощелочными значениями рН (6,8...7,6), грибы — в кислых средах (рН 3,0...6,0). рН среды доводят до нужного значения дробным внесением слабых растворов щелочи, 10%-го раствора соды или кислоты. Например, надо приготовить 1000 мл МПБ с рН 7,4. При стерилизации сред рН обычно снижается приблизительно на 0,2, поэтому перед стерилизацией рН среды доводим до 7,6. Для этого к 40 мл МПБ с исходным значением рН добавляем 4 мл 0,1 н. раствора гидроксида натрия. Следовательно, на 1000 мл МПБ необходимо добавить в 25 раз больше раствора щелочи (100 мл).
В процессе роста микроорганизмов на питательных средах кислотность достаточно быстро может выйти за пределы оптимальной. Чтобы поддержать необходимое значение рН, в среды нередко добавляют фосфатные буферные смеси. При выращивании микроорганизмов в реакторах рН среды корректируют периодическим добавлением раствора щелочи или кислоты.
Окислительно-восстановительный потенциал (ОКВП, Eh). Рост микроорганизмов тесно связан с окислительно-восстановительными условиями питательной среды, которые влияют на работу окислительно-восстановительных систем микробных клеток. ОКВП принято отсчитывать относительно окислительно-восстановительного потенциала водорода H2↔2Н++2е Стандартное значение потенциала этой реакции при рН 7,0 (Е0) составляет —420 мВ. Большое отрицательное значение стандартного ОКВП водорода характеризует его высокую восстановительную способность, т. е. способность отдавать электроны. Стандартный ОКВП системы Н20↔1/2 О2+ 2Н+ + 2е равен 820 мВ. Большое положительное значение потенциала в данном случае объясняет низкую способность воды отдавать электроны и одновременно высокую способность молекулярного кислорода акцептировать электроны. ОКВП можно измерять электрометрическим способом. В этом случае используют электрод измерения и электрод сравнения, потенциал последнего по отношению к стандартному водородному электроду известен. ОКВП системы по отношению к водороду обозначают как Eh. Измеряют Eh питательной среды, например, при помощи иономера И-130.
Прибор включают в сеть и прогревают 30 мин.
Переключатель рода работ переводят в положение «V».
Погружают электроды в стакан с раствором, при этом следят, чтобы электрод сравнения был установлен на несколько миллиметров ниже измерительного.
После установления показаний их снимают в мВ.
Для корректировки ОКВП питательных сред в них добавляют различные вещества (см. «Культивирование анаэробных бактерий» в данной теме).
В питательных средах повышение ОКВП в основном связано со степенью насыщения кислородом. Аэробы хорошо растут при высоких положительных значениях Eh, рост большинства анаэробов прекращается при Eh, выше —100 мВ, а строгих анаэробов — при Eh превышающем —330 мВ.
О значении Eh также можно судить по цвету окислительно-восстановительных красителей, которые окрашены в окисленном состоянии и бесцветны в восстановленном. Различные красители восстанавливаются при разных значениях Eh, поэтому подбором красителей можно контролировать ОКВП питательных сред. Значение Eh, при котором краситель окислен или восстановлен на 50 % при рН 7,0, называют стандартным ОКВП (Е0). Например, для метиленового синего Е0 составляет 11 мВ, резоруфина - 51 мВ, феносафранина - 252 мВ.
Активность воды и осмотическое давление. Микроорганизмы поглощают питательные вещества в виде растворов, поэтому вода — абсолютно необходимый компонент любой среды. Минимальная предельная влажность питательной среды для роста бактерий составляет 20...30 %, грибов — 15%. Однако вода в питательной среде частично связана с растворенными в ней веществами и поэтому недоступна для микроорганизмов. Содержание воды в доступной для микробов форме выражают показателем активности воды (а„), которую определяют как отношение давления водяного пара над питательной средой (раствором) к давлению паров над чистой водой (Р/Р0)- У дистиллированной воды aw = 1,0. Бактерии растут в средах с 0w = 0,95...0,99. Активность воды в среде можно определить по формуле аw = A/100, где А — относительная влажность (%) атмосферы, которую измеряют при равновесии в закрытом сосуде, содержащем питательную среду.
Существенное отклонение осмотического давления питательной среды от оптимального тормозит рост бактерий. Именно по этой причине соль и сахар в высоких концентрациях используют для консервирования пищевых продуктов. Среди болезнетворных бактерий только некоторые виды способны расти при повышенных концентрациях хлорида натрия в питательной среде (стафилококки, листерии). Наиболее доступный способ достижения оптимальных значений осмотического давления и активности воды в бактериологических питательных средах — это добавление в них хлорида натрия (0,5 %) или некоторых других солей.
Дата добавления: 2016-07-22; просмотров: 2519;